细胞培养与转染适应性数据库/细胞因子精要概览
1.移除并弃掉培养液。
2.用0.25%胰蛋白酶/0.53 mM EDTA溶液冲洗细胞层,以除去含胰蛋白酶抑制剂的痕量血清。
3.向培养瓶中加入2.0-3.0 mL胰蛋白酶EDTA溶液,并在倒置显微镜下观察细胞直至细胞层分散(通常在5至15分钟内)。
4.加入6.0-8.0 mL完全生长培养基,轻轻吹打吸出细胞。
5.将适当等份的细胞悬浮液加入新培养瓶中。推荐接种2×103-6×103活细胞/ cm2。
6.37℃孵育培养细胞,传代培养细胞密度在6-7×104细胞/ cm2之间。
1.准备待转染细胞:按照A549细胞5×104/孔的密度接种于24孔板中,37 ℃培养过夜。
2.转染前30分钟,将待转细胞更换成新鲜培养基。
3.准备Ultrafection2.0/DNA复合物:将0.5 μg DNA溶于25 μL的无血清培养基中混匀,将1.5 μL Ultrafection2.0加入25 μL的无血清培养基中混匀;两者混匀后室温孵育10分钟。
4.转染:将上述Ultrafection2.0/DNA复合物加入每孔细胞(含培养基450 μL),复合物占总体积的1/10,轻柔摇匀。37 ℃孵育24-48小时。必要时,转染6小时后可换新鲜培养基。
依据含特定生长因子添加物的培养基使用步骤培养
依据含特定生长因子添加物的培养基使用步骤培养
1.移除并弃掉培养液。
2.用0.25%胰蛋白酶/0.53 mM EDTA溶液冲洗细胞层,以除去含胰蛋白酶抑制剂的痕量血清。
3.向培养瓶中加入2.0-3.0 mL胰蛋白酶EDTA溶液,并在倒置显微镜下观察细胞直至细胞层分散(通常在5至15分钟内)。
4.加入6.0-8.0 mL完全生长培养基,轻轻吹打吸出细胞。
5.将适当等份的细胞悬浮液加入新培养瓶中。推荐接种2×103-6×103活细胞/ cm2。
6.37℃孵育培养细胞,传代培养细胞密度在6-7×104细胞/ cm2之间。
1.准备待转染细胞:按照293细胞5×104/孔的密度接种于24孔板中,37 ℃培养过夜。
2.转染前30分钟,将待转细胞更换成新鲜培养基。
3.准备Ultrafection2.0/DNA复合物:将0.5 μg DNA溶于25 μL的无血清培养基中混匀,将1.5 μL Ultrafection2.0加入25 μL的无血清培养基中混匀;两者混匀后室温孵育10分钟。
4.转染:将上述Ultrafection2.0/DNA复合物加入每孔细胞(含培养基450 μL),复合物占总体积的1/10,轻柔摇匀。37 ℃孵育24-48小时。必要时,转染6小时后可换新鲜培养基。